貼壁細(xì)胞在培養(yǎng)時(shí)要貼附于培養(yǎng)(瓶)器皿壁上,細(xì)胞一經(jīng)貼壁就迅速鋪展,然后開(kāi)始有絲分裂,并很快進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期。
傳代后細(xì)胞全部飄起
解決方法:檢查所使用的培養(yǎng)基的顏色是否偏紫色(如圖1),檢查瓶蓋是否透氣,不透氣瓶蓋是否被擰松。
圖1. 培養(yǎng)基顏色偏紫
通常培養(yǎng)基偏堿,顏色就會(huì)偏紫,主要是因?yàn)榕囵B(yǎng)基里的酚紅指示劑遇酸變黃、遇堿變紫,培養(yǎng)基量太少,或培養(yǎng)基存放時(shí)間太長(zhǎng)時(shí)都會(huì)變堿。建議配好完-全培養(yǎng)基后分裝到50mL離心管并于一周內(nèi)用完,量少時(shí)放到15mL離心管里保存。
傳代后部分細(xì)胞漂浮
原因及解決方法如下
傳代前細(xì)胞密度太大:一般細(xì)胞匯合度達(dá)到80%時(shí)可進(jìn)行傳代操作,傳代密度需適中,傳代密度過(guò)高也會(huì)導(dǎo)致傳代后漂?。?/p>
細(xì)胞狀態(tài)不好:可通過(guò)提高血清比例、穩(wěn)定培養(yǎng)環(huán)境等方法進(jìn)行改善;
吹打次數(shù)過(guò)多造成機(jī)械損傷:輕柔吹打,細(xì)胞呈單顆粒時(shí)可停止吹打,吹打過(guò)程避免氣泡產(chǎn)生;
培養(yǎng)基更換后不適應(yīng):更換回原來(lái)的培養(yǎng)基;或者與原培養(yǎng)基比例混合后使用,使細(xì)胞有個(gè)適應(yīng)期。
傳代后細(xì)胞變形
原因及解決方法如下
1)變形,但細(xì)胞還在生長(zhǎng):可能是血清批次不一樣導(dǎo)致,血清成分復(fù)雜,不同批次和品牌間均存在成分差異,影響細(xì)胞狀態(tài)。建議使用同一批次血清,更換血清時(shí)需與原血清比例混合后使用,使細(xì)胞有過(guò)渡期;
2)變形,但細(xì)胞不長(zhǎng),且碎片增多:可能傳代操作過(guò)程損傷,常見(jiàn)于消化不當(dāng),或者潛在支原體等污染導(dǎo)致細(xì)胞病態(tài);消化時(shí)間根據(jù)每個(gè)細(xì)胞的狀態(tài)來(lái)調(diào)整,消化過(guò)度或者消化不充分均會(huì)對(duì)細(xì)胞造成影響;培養(yǎng)過(guò)程應(yīng)嚴(yán)格無(wú)菌操作,實(shí)驗(yàn)環(huán)境盡量潔凈,確保細(xì)胞無(wú)外源污染。
細(xì)胞生長(zhǎng)周期變慢,邊養(yǎng)邊漂
原因及解決方法如下
細(xì)胞傳代時(shí)密度太稀或太密:建議細(xì)胞密度達(dá)80%左右進(jìn)行傳代,傳代密度適中,密度過(guò)低會(huì)延長(zhǎng)生長(zhǎng)周期;
傳代操作不當(dāng):根據(jù)細(xì)胞特性決定細(xì)胞消化時(shí)間,一般在顯微鏡下觀察細(xì)胞回縮變圓并有少量細(xì)胞脫落即可終止消化,難消化的細(xì)胞可分次消化,每次時(shí)間不超過(guò)5min;頻繁換液或者清洗細(xì)胞也會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞狀態(tài)變差,常規(guī)換液時(shí)間間隔為2~3天。
傳代后細(xì)胞成團(tuán)
解決方法如下
低密度接種,延長(zhǎng)換液時(shí)間,防止細(xì)胞脫落;
使用多聚賴氨酸包被培養(yǎng)器皿,以增加細(xì)胞貼壁牢固度,降低細(xì)胞聚集成團(tuán)的幾率;
重新鋪板,并更換新配制的培養(yǎng)基,加大血清比例(增加比例不超過(guò)5%);
接種時(shí),減少培養(yǎng)基量(如T25加3mL)以加快細(xì)胞貼壁速度,等待細(xì)胞貼壁后(約8-12小時(shí)),再補(bǔ)加培養(yǎng)基到正常用量。
細(xì)胞出現(xiàn)空泡
原因及解決方法如下
1)正常的細(xì)胞活動(dòng):有的細(xì)胞有正常的自噬行為或其他膜泡活動(dòng),無(wú)需特殊處理(如Caco-2細(xì)胞);
2)血清不適應(yīng)、培養(yǎng)基成分改變、換液不及時(shí)等造成細(xì)胞營(yíng)養(yǎng)不良:可通過(guò)更換更合適的血清或及時(shí)換液等方法解決;
3)機(jī)械損傷、PH偏高或偏低等造成細(xì)胞受損:注意培養(yǎng)條件及操作手法。